Главная страница MolBiol.ru > Методы > Complex-hyb > Меченье polyА+РНК и гибридизация Rambler's Top100  English version
[Войти] [Регистрация]
ГЛАВНАЯ · ПРОЕКТ · СПРАВОЧНИК · МЕТОДЫ · РАСТВОРЫ · РАСЧЁТЫ · ЛИТЕРАТУРА · ЗАДАЧИ · FULL TEXT · ОРГ.ВОПРОСЫ · WEB
ФИРМЫ · КАРТА САЙТА · COFFEE BREAK · КАРТИНКИ · РАБОТЫ И УСЛУГИ · БИРЖА ТРУДА · ФОРУМЫ · Выделите орфографическую ошибку мышью и нажмите Ctrl+Enter. Сделаем язык чище! · Zbio-wiki
Хеликон · Диаэм · ИнтерЛабСервис · Beckman Coulter · SkyGen · ОПТЭК · BIOCAD · Евроген · Синтол · БиоЛайн · Sartorius · Химэксперт · СибЭнзим · Tecan · Даниес · НПП "ТРИС" · Биалекса · ФизЛабПрибор · Genotek · АТГ Сервис Ген · Биоген-Аналитика      

Random primer на polyA+RNA

Random primer
Очистка от RNA
Гибридизация
Отмывка
Растворы
С-mix
HSB (f+)
Комментарии
Общие
По пунктам
 Дополнить
 

    Random primer

  1. в пробирку:

    2. d(N)6 primer (50 OE ~1.7µg/µl) - 1µl
    polyA+RNA ~1.5µg
    H2O до суммарного V=28.5µl в п.4;

  2. 70oC, 5';
  3. 0oC, 2';
  4. добавить:

    5. 5x FSB (first strand buffer) - 6µl
    0.1M DTT - 3µl
    C-mix, 20x - 1.5µl
    RNase Block - 1µl
    a[33P]dCTP (10µCi/µl) - 7µl

  5. 37oC, 2';
  6. + SuperScript RT (200u/µl) /BRL/1.5µl;
  7. 37oC, 1h;
  8. 0oC, определить процент включения по преципитации 10% ТХУ.


    9. Очистка от RNA

  9. + 3.5µl 3N NaOH;
  10. 68oC, 20';
  11. добавить:

    12. 1M TrisCl (pH 7.4) - 10µl,
    1N HCl - 10.5µl;

  12. чистить на G-50 Spin-колонке:

    13. а) ЦФ 1.5krpm, 1',
    б) сбросить элюат,
    в) нанести на колонку RP-смесь,
    г) ЦФ 2.5krpm, 2';

  13. определить % включения "просчитав" колонку.


    14. Гибридизация

  14. предгибридизация в HSB(f+) 50oС, ~30'-1h;
  15. гибридизация 50oC ~8h, затем 45oС, ~40h (2x ON);


    16. Отмывка

  16. (I) 2-3х 15', NT-68oC:
    17. Конц.Сток1L
    SSC1x20x50ml
    SDS0.1%10%10ml
    H2O mQ940ml
  17. (II) 2х 20-30', 68oC:
    18. Конц.Сток1L
    SSC0.2x20x10ml
    SDS0.1%10%10ml
    H2O mQ980ml


MolBiol.ru: http://molbiol.ru
e-mail: redactor@molbiol.ru
просмотров: 22392

    Растворы

    С -mix

    20x, (хранить при -20oС)

    Конц.Сток100µl
    dATP20mM100mM20µl
    dGTP20mM100mM20µl
    dTTP20mM100mM20µl
    dCTP0.12mM5mM2.4µl
    H2O mQ37.6µl

    HSB (f+)

    high SDS hybridization buffer(хранить основной сток при 4oС, рабочий - NT)

    Конц.Сток500ml
    SDS7%тв.35g
    Formamid50%100%250ml
    283.3g
    SSC5x20x125ml
    145.3g
    Bloc. Reagent2%тв.10g
    NaP (pH 7.0)50mM1M25ml
    27.6g
    N-Lauroylsarcosine Na0.1%10%5ml
    5.1g
    Salm.Sperm DNA50µg/ml10µg/µl2.5ml
    H2O mQ49ml

    p=1.111

    • вместо 2% Blocking Reagent ("Roche Diagnostics GmBH; бывший Boehringer Mannheim"
      #1 096 176) можно использовать 10x Denhardt или сухое обезжиренное молоко.
    • Blocking Reagent можно растворить, лишь в буфере с высокой ионной силой (в данном случае - в H2O+SSC+NaP).
    • Salmon sperm DNA должна быть раздробленной и денатурированной.

Смотри также:
/ссылки на сетевые ресурсы/


-- как прислать био-картинку --

    Комментарии

    Общие

  • Чувствительность complex hybridization практически одинакова при использовании Р32и Р33(мембрана в обоих случаях завернута в Saran Wrap).


    • По пунктам

    п. 1.

  • Если мечение проходит с oligo dT праймера, то вместо (dN)6 нужно взять (dT)6 из расчета ~0.7µg на 1.5µg polyA+RNA.

    • п. 13.

  • Вначале просчитать колонку вместе с элюатом, а затем убрать колонку и просчитать только элюат. Это очень быстрый, но не слишком точный (скорее качественный) метод.

    • п. 14.

  • Очень важно, чтобы мембрана постоянно оставалась влажной начиная с п.14.
  • Сравнивать гибридизационные картинки можно только на мембранах из одного и того же лота.

    • п. 15.

  • Для гибридизации можно использовать тот же буфер, что использовался для предгибридизации, если мембрана новая. Если мембрана была отшпарена, она попадает в гибридизационный стакан влажной и может как-то (неконтролируемо) разбавить гибридизационный буфер. В этом случае мы предпочитаем менять предгибридизационный буфер на новый.
  • Очень важно не слишком экономить на объёме буфера (и внимательно следить, чтобы под мембрану не попали пузыри воздуха), так как иначе на фильтре будут заметны пятна ослабленной гибридизации.

    • п. 16.

  • Отмывку (I) можно проводить при любой температуре от NT до 680C.

    • п. 17.

  • Для горячей отмывки (II) мало поместить стакан с мембраной в горячий гибридайзер. Раствор для отмывки нужно заранее довести до 680C и заливать в стакан уже горячим (лучше заливать в два приёма – первой порцией сполоснуть гибридизационный стакан от старого буфера и одновременно подогреть его, а второй порцией отмывать мембрану указанное время).

    Дополнения, комментарии, вопросы

    Люди знающие! Здесь недостаёт того, что знаете вы, но не знал или забыл автор. Этой страницей пользуются ваши коллеги. Пожалуйста, поделитесь с ними опытом. Пригодится всё, что поможет в работе.





       
    Для тех, у кого не установлена русская раскладка клавиатуры: кнопка "Транслит" перекодирует текст из латиницы в кирилицу. Текст в квадратных скобках "[]" не преобразуется. Остальные правила перекодировки здесь.
Дата последней модификации: 30/07/13

ГЛАВНАЯ · ПРОЕКТ · СПРАВОЧНИК · МЕТОДЫ · РАСТВОРЫ · РАСЧЁТЫ · ЛИТЕРАТУРА · ЗАДАЧИ · FULL TEXT · ОРГ.ВОПРОСЫ · WEB
ФИРМЫ · КАРТА САЙТА · COFFEE BREAK · КАРТИНКИ · РАБОТЫ И УСЛУГИ · БИРЖА ТРУДА · ФОРУМЫ · Выделите орфографическую ошибку мышью и нажмите Ctrl+Enter. Сделаем язык чище! · Zbio-wiki
Хеликон · Диаэм · ИнтерЛабСервис · Beckman Coulter · SkyGen · ОПТЭК · BIOCAD · Евроген · Синтол · БиоЛайн · Sartorius · Химэксперт · СибЭнзим · Tecan · Даниес · НПП "ТРИС" · Биалекса · ФизЛабПрибор · Genotek · АТГ Сервис Ген · Биоген-Аналитика      

 ·  Викимарт - все интернет-магазины в одном месте  ·  Доска объявлений Board.com.ua  · 
--- сервер арендован в компании Hetzner Online, Германия ---
--- администрирование сервера: Intervipnet ---

molbiol.ru  ·  redactor@molbiol.ru  ·  реклама

molbiol.ru - методы, информация и программы для молекулярных биологов   Rambler