![]() | ![]() ![]() |
Molbiol.ru | О проекте | Справочник | Методы | Растворы | Расчёты | Литература | Орг.вопросы Web | Фирмы | Coffee break | Картинки | Работы и услуги | Биржа труда | ![]() NG SEQUENCING · ЖИЗНЬ РАСТЕНИЙ · БИОХИМИЯ · ГОРОДСКИЕ КОМАРЫ · А.А.ЛЮБИЩЕВ · ЗООМУЗЕЙ Темы за 24 часа [ Вход* | Регистрация* ] Форум: | |
![]() ![]() ![]() |
![]() Постоянный участник на сервере в Москве ![]() |
Метод можно использовать для выделения/очистки как двухцепочечной, так и одноцепочечной DNA. Он позволяет выделять фрагменты ~0.2-15kbp с эффективностью не менее 80%. Можно чистить DNA в водных растворах (между ферментативными реакциями). Описано приготовление Glass Milk. |
![]() ![]() |
|
Гость IP-штамп: frsCQkPH3djzA гость ![]() |
1. Run 1.3 % agarose gel with PCR fragment and DNA lader marker. 2. Cut piece of glass filter and cover it with elution membrane from one side. They both should be the same size. I user “Spectarapor membrane tubing, M.W. cutoff 12 000 – 14 000 Dalton). 3. Make a hole in the agarose gel just in front of your PCR fragment and insert glass filter/ elution membrane in the hole. Glass filter face PCR fragment side. 4. TAE buffer should not over cover the gel. Pour out extra TAE buffer. Dry gel with paper towel. 5. Run gel for 5 more min at 108 V (your DNA from PCR fragment will be on your glass filter). 6. Place filter into 500ml tube. Make a cut in the bottom of the tube with a needle. Place this tube into 1.5 ml Epinforf tube. Centrifuge for 8 min 13 000 rpm. 7. Precipitate with 0.7 volume of iso-propanol. Centrifuge 15 min 13 000 rpm. 8. Wash with cold 70% ethanol. Let it dry. Dissolve in 20ml TE. Gel: _ _ _ _ PCR fragment ------- glass filter ------- elution membrane Storage of elution membrane. Cut the elution membrane into 5 cm pieces. Cut off the edges of membrane. Boil for 30 min in H2O. Replace H2O to 1mM EDTA. Boil for 1 min. Store at 40 C up to 6 months. |
![]() Участник Москва vs. Европа ![]() |
Поиграли с временем для растворения агарозы, связвания и элюции - помогает, но незначительно. Чешем в затылке. |
![]() Участник ![]() |
В чем может быть проблема? Выделяю геномную ДНК. |
guest: ммм IP-штамп: frwHRv5zEzGDY гость ![]() |
У вас перегрузка по ДНК. Силки - мало, ДНК- много |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(guest: ммм @ 29.06.2010 17:41) ммм прав. Возможно, еще силика очень мелкая. Каким китом пользуютесь? |
![]() Участник ![]() |
(-Ъ- @ 29.06.2010 21:24) силика - сигмовская. буферы - классические. А Вы не в курсе как фракция частиц (1-10 мкм) влияет? |
guest: ммм IP-штамп: frwHRv5zEzGDY гость ![]() |
|
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
У Сигмы-Олдрджа несколько десятков силик(гелей) и ей подобных аналогов. Синтетических и природных, волокнистых и сферических и т д.. Говорите, буфера классические? ![]() |
![]() Участник ![]() |
(-Ъ- @ 30.06.2010 15:43) ![]() У Сигмы-Олдрджа несколько десятков силик(гелей) и ей подобных аналогов. Синтетических и природных, волокнистых и сферических и т д.. Говорите, буфера классические? ![]() Ну енто гуанидинистые) а не '90' |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(Pythonoid @ 29.06.2010 16:46) ![]() В чем может быть проблема? Выделяю геномную ДНК. Можно попробовать уменшить скорость ЦФ до 2 тыс/мин, но увеличить время ЦФ до 1 мин. Пипетирование отменяется - только вортексирование. С силикой Sigma S-5631 это обычная история ... ![]() |
![]() Участник ![]() |
(-Ъ- @ 01.07.2010 12:11) ![]() С силикой Sigma S-5631 это обычная история ... ![]() А на что лучше заменить ее? На celite? |
guest: ммм IP-штамп: frwHRv5zEzGDY гость ![]() |
Это почти песок, очень грубая фракция не нада на нее заменять. Подходит селикагель от 10 до 20-50 микрон.
|
![]() Постоянный участник ![]() |
|
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(RJ Dio @ 02.07.2010 15:06) ![]() С молоком вам не повезло в детстве. ![]() |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
|
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
![]() |
![]() ![]() |
www.diamond-dna.ru кто-нибудь пробовал выделение днк ? это что челекс русский чтоли или что-то еще |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(anybody @ 18.07.2010 10:59) ![]() www.diamond-dna.ru кто-нибудь пробовал выделение днк ? это что челекс русский чтоли или что-то еще Не разобрался - сайт такой смешной. ![]() ![]() Похвально то, что пробники дают. Так что попробуйте и нам расскажете. |
guest: ммм IP-штамп: frKx.BJzj62lY гость ![]() |
Судя по названию и проскакивающему лет 6-7 назад на форуме вопросу про нано алмазы и ДНК E.coli. Наночастицы это наноалмаз, получаемый взрывотехническим способом. --3. Дополнительная очистка раствора осаждением белков (ДНК остается в растворе). Происходит дополнительная очистка ДНК от белков, полисахаридов и компонентов лизис-буфера. Странно, но возможно ПЭГ. --4. Осаждение и отмывка ДНК. Происходит селективное осаждение молекул ДНК высокоэффективным осадителем. Осаждающий буфер абсолютно нетоксичен и инертен; в отличие от спиртов, используемых для осаждения ДНК, не ингибирует ПЦР. Скорее всего высокая соль, возможно ацетат магния или кальция |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
|
![]() Постоянный участник ![]() |
|
![]() Постоянный участник ![]() |
|
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(metrim @ 04.12.2016 20:27) Нельзя. МММ - теоретик. ![]() |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(metrim @ 04.12.2016 20:27) Кстати, о какой методике речь? Много воды утекло за 6 лет. Агароза в КСI не плавится, даже при нагревании. Но самое главное - ДНК не липнет к сорбенту (силике) при высокой конц-ции КСI. Проверено собственноручно более 20 лет назад. Сообщение было отредактировано -Ъ- - 05.12.2016 10:47 |
![]() Постоянный участник ![]() |
|
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(genseq @ 05.12.2016 12:03) Ах да...KI ![]() ![]() Прав был мой друг - в понедельник надо выходить на работу после обеда. ![]() ![]() |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
(-Ъ- @ 05.12.2016 10:50) Ну вот собственно о методике по выделению ДНК из форезного геля , той что в разделе Методы и к которой дданная ветка - "коменты"На хлорид калия я ничего менять и не собирался ![]() Ну так иодид натрия на калий заменить без эффекта на работоспособность в буфере длф плавления можно? Почему "если нет разницы" везде в методиках я вижу тока иодид натрия? |
![]() Постоянный участник ![]() |
Сообщение было отредактировано MMM - 05.12.2016 12:44 |
![]() Постоянный участник Москва ![]() |
Протоколы на эту тему висят в инете, а самого Bio101 страницу не нашел. Видимо Кайджин сожрал с патрохами.
|
![]() Постоянный участник ![]() |
|
![]() Постоянный участник ![]() |
(genseq @ 04.12.2016 22:21) я бы не удивился. ТОгда по определению работать не должно |
![]() Постоянный участник ![]() |
|
« Предыдущая тема · Молекулярная и клеточная биология · Следующая тема » |
![]() ![]() ![]() |